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目的:探讨活化蛋白C在脂多糖诱导的小胶质细胞活化中的作用。方法取新生1日龄Sprague-Dawley大鼠,分离脑组织,原代培养小胶质细胞并进行分离纯化及鉴定。纯化小胶质细胞随机分成4组,分别为脂多糖组(1.0μg/ml脂多糖,12 h后给予10μl磷酸盐缓冲液)、脂多糖+活化蛋白C组(1.0μg/ml脂多糖,12 h后给予0.1μg/ml活化蛋白C)、活化蛋白C组(10μl磷酸盐缓冲液,12 h后给予0.1μg/ml活化蛋白C)和对照组(相应时间点各10μl磷酸盐缓冲液)。观察各组小胶质细胞形态变化,并通过免疫荧光标记技术检测肿瘤坏死因子-α及蛋白酶活化受体-1的表达情况。采用方差分析及LSD检验进行统计分析。结果成功培养小胶质细胞,且纯度≥99

作者:邓诗桦;金圣娟;付溪;刘艳;宁琴;罗小平

来源:中华围产医学杂志 2016 年 19卷 4期

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作者:
邓诗桦;金圣娟;付溪;刘艳;宁琴;罗小平
来源:
中华围产医学杂志 2016 年 19卷 4期
标签:
小神经胶质细胞 蛋白质C 肿瘤坏死因子α 脂多糖类 Microglia Protein C Tumor necrosis factor-alpha Lipopolysaccharides
目的:探讨活化蛋白C在脂多糖诱导的小胶质细胞活化中的作用。方法取新生1日龄Sprague-Dawley大鼠,分离脑组织,原代培养小胶质细胞并进行分离纯化及鉴定。纯化小胶质细胞随机分成4组,分别为脂多糖组(1.0μg/ml脂多糖,12 h后给予10μl磷酸盐缓冲液)、脂多糖+活化蛋白C组(1.0μg/ml脂多糖,12 h后给予0.1μg/ml活化蛋白C)、活化蛋白C组(10μl磷酸盐缓冲液,12 h后给予0.1μg/ml活化蛋白C)和对照组(相应时间点各10μl磷酸盐缓冲液)。观察各组小胶质细胞形态变化,并通过免疫荧光标记技术检测肿瘤坏死因子-α及蛋白酶活化受体-1的表达情况。采用方差分析及LSD检验进行统计分析。结果成功培养小胶质细胞,且纯度≥99

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